CAPÍTULO 12: Infecciones causadas por parásitos

INTRODUCCIÓN

La detección y diagnóstico de infecciones por parásitos dependen de varios métodos de laboratorio, historia clínica, historial de viajes y la ubicación geográfica del caso. Los parásitos pueden dividirse en grupos sobre la base de sus ciclos de vida: los que tiene y no tienen huésped intermediario. Los parásitos que no tienen huésped intermediario se transmiten directamente al ser humanos a través de alimentos o agua contaminada, y los parásitos que tienen un huésped intermediario involucran un mamífero de gran tamaño, roedores o insectos en los que completan sus ciclos vitales (figura 12.1).

Los parásitos se dividen en dos grupos:

1. Protozoos: son células eucariotas, con base en su forma de reproducción y sus medios de locomoción se dividen en:

   1. Flagelados: Giardia lamblia, Leishmania spp., Trichomonas vaginalis, Trypanozoma spp.

   2. Amebas: especies de Acanthamoeba, Endolimax nana, Iodamoeba butschlii, Naegleria fowleri, Entamoeba spp.

   3. Esporozoos: Babesia microti, especies de Cryptosporidium, Cyclospora cayetanensis, Plasmodium spp.

   4. Ciliados: Balanditium coli.

2. Helmintos: animales invertebrados de cuerpo largo y blando, varían de tamaño desde milímetros a metros.

   1. Nematodos (cilíndricos): Ancylospora spp., Ascaris lumbricoides, Baylisascaris procyonis, Enterobius vermicularis, Necator americanus, Onchocerca volvulus, Strongyloides stercoralis, Toxocara canis, Trichinela spiralis, Trichuris trichura.

   2. Trematodos (planos): Clonorchis sinesis, Fasciola hepatica, Fasciolpsis buski, Schistosoma spp.

   3. Cestodos (proglótidas): Hymenolepsis nana, Taenia spp.

Uno de los pasos más importantes en el diagnóstico de parásitos consiste en la recolección adecuada de las muestras. Cuando se recolectan incorrectamente dan resultados inexactos. Los especímenes frescos son obligatorios para la recuperación de trofozoítos móviles.

RECOLECCIÓN DE MUESTRAS

Según la ubicación corporal, los parásitos que podemos identificar son:

• Sangre: Plasmodium spp., Babesia spp., Leishmania donovani Toxoplasma gondii, Trypanosoma spp., microfilarias.

  • Se recomienda recolectarla en un tubo con anticoagulante mediante punción venosa.

• Sistema nervioso central: Taenia solium, Echinococcus spp., Naegleria fowleri, Acanthamoeba spp., Hartmanella spp., Balamuthia mandrillaris, Sappinia diploidea, T. gondii, Trypanosoma spp.

  • Recolectar LCR mediante punción lumbar.

• Ojos: Acanthamoeba spp., T. gondii, microsporidia.

  • Realizar raspados corneales o biopsia de córnea.

• Tracto intestinal: Entamoeba histolytica, Entamoeba dispar, Entamoeba coli, Entamoeba hartmanni, Endolimax nana, Iodamoeba bütschlii, Blastocystis spp., Giardia lamblia (G. duodenalis, G. intestinalis), Chilomastix mesnili, Dientamoeba fragilis, Pentatrichomonas hominis, Balantidium coli, Cryptosporidium parvum, Cryptosporidium hominis, Cryptosporidium spp., Cyclospora cayetanensis, Cystoisospora belli, Enterocytozoon bieneusi, Encephalitozoon intestinalis, Ascaris lumbricoides, Enterobius vermicularis, Strongyloides stercoralis, Trichuris trichiura, Hymenolepis nana, Hymenolepis diminuta, Taenia saginata, Taenia solium, Diphyllobothrium latum, Clonorchis sinensis, Metagonimus yokogawai, Heterophyes heterophyes.

  • Para muestras de heces, evitar administración de agentes antidiarreicos, el uso de aceite mineral, bismuto y bario antes de la recolección fecal, ya que todas estas sustancias pueden interferir con la detección o identificación de parásitos.

  • Recolectar la muestra fecal en un recipiente limpio de boca ancha, transferir ...